pdf35

Ribogospod. nauka Ukr., 2022; 2(60): 84-98
DOI: https://doi.org/10.15407/fsu2022.02.084
УДК: 597-12:578:[597.587.9](262.5+262.54)

Скринінг вірусних захворювань у чорноморської камбали-калкана (Scophthalmus maeoticus, Pallas, 1814) у північному Причорномор’ї та Азовському морі

Ю. П. Рудь, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , Інститут рибного господарства НААН, м. Київ
О. Кащин, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , С.Є. Одеський центр Південного науково-дослідного інституту морського рибальства та океанографії (ДП Одеський центр ЮгНІРО), Одеса
І. І. Грициняк, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , Інститут рибного господарства НААН, м. Київ
Л. П. Бучацький, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , Інститут рибного господарства НААН, м. Київ

Мета. Розвиток морської аквакультури в Чорному морі є актуальним і перспективним з багатьох причин, про що йдеться в рішеннях і документах національних організацій регіону та Генеральної комісії з рибальства в Середземному морі (GFCM). Камбала є однією з найцінніших риб в країнах басейну Чорного моря, а також у Європейському Союзі. Різні аспекти біології та культивування камбали вже досліджені. Але, на жаль, не проводиться процедура спостереження за особливо небезпечними інфекційними захворюваннями риб та аналіз можливості їх запобігання й поширення. Тому у цьому дослідженні з метою оцінки даних щодо вірусних захворювань камбали в Україні у 2020 р. було проведено скринінгове дослідження природної популяції чорноморського калкана (Scophthalmus maeoticus) у північних частинах Чорного та Азовського морів.

Методологія. Перед відбором зразків рибу оглядали візуально на присутність будь-яких зовнішніх уражень, проводили виміри загальної довжини та маси. Відбір зразків включав пул внутрішніх органів, зябра та головний мозок. Для виявлення вірусних захворювань використовувалися методи культури клітин та полімеразної ланцюгової реакції (ПЛР).

Результати. Зовнішній огляд риби не виявив будь-яких ознак ураження чи захворювання. Внутрішні органи, як і зябра, були в задовільному стані, мали відповідний колір, форму, без патологічних змін. Усі досліджені зразки були вільні від вірусів IPNV, VHSV та VNN, що було визначено методами культури клітин та ПЛР. Цитопатичний ефект (ЦПЕ) на клітинах не спостерігався після першого та другого сліпих пасажів. Використовуючи метод ЗT-ПЛР, ми не ідентифікували жодного з вірусів, які шукали.

Наукова новизна. Це була перша спроба скринінгу вірусних захворювань калкана в українських водах Чорного та Азовського морів.

Практична значимість. Надалі постійне спостереження за вірусними захворюваннями у калкана відповідно до стратегії ЄС щодо здоров’я тварин дозволить запобігти спалахам інфекційних захворювань та розробити нові підходи до діагностичних тестів з метою вивчення екології патогенів.

Ключові слова: камбала-калкан, Чорне море, вірусні захворювання, культура клітин, ПЛР.

ЛІТЕРАТУРА

  1. A global blue revolution: Aquaculture growth across regions, species, and countries / Garlock T. et al. // Reviews in Fisheries Science and Aquaculture. 2020. Vol. 28(1). P. 107—116. https://doi.org/10.1080/23308249.2019.1678111.
  2. EUMOFA. Case study. Turbot in the EU. EUMOFA (2018). URL: http://www.eumofa.eu/docu-ments/20178/114389/Turbot+in+the+EU (accessed : 01.03.2022).
  3. FEAP Production Report 2020 (18 December 2020). URL: https://feap.info/index.php/data (accessed : 01.03.2022).
  4. Khanaychenko A. N. Giragosov V. E., Gaevskaya A. V. Epizootological state of the wild black sea turbot (kalkan) grossly visible pathology: preliminary data // Marine Ecological Journal. 2012. Vol. 11 (4). P. 85—94. https://doi.org/10.21072/MEJ_2012_11_4_85 
  5. Ogut H., Altuntas C., Parlak R. Viral Surveillance of Cultured Rainbow Trout in the Eastern Black Sea, Turkey // Journal of Aquatic Animal Health. 2013. Vol. 25 (1). P. 27—35. DOI: 10.1080/08997659.2012.732652.
  6. Ozturk R. C. Altınok I. Bacterial and Viral Fish Diseases in Turkey //  Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2014. Vol. 14. P. 275—297. http://doi.org/10.4194/1303-2712-v14_1_30.
  7. Kalayci G., Incoglu S., Özkan  B. First isolation of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) virus from turbot (Scophthalmus maximus) cultured in the Trabzon coastal area of the Black Sea in Turkey // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2006. Vol. 26(4). P. 157—162.
  8. Genotyping and Pathogenicity of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus from Free-Living Turbot (Psetta maxima) in a Turkish Coastal Area of the Black Sea / Nishizawa T. et al. // Applied and environmental microbiology. 2006. Vol. 72 (4). P. 2373—2378 doi:10.1128/AEM.72.4.2373–2378.2006.
  9. Isıdan H., Bolat Y. A Survey of Viral Hemorrhagic Septicemia (VHS) in Turkey // Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2011. Vol. 11. P. 507—513. doi: 10.4194/1303-2712-v11_4_01.
  10. Ogut H., Altuntas C. Occurrence and prevalence of infectious pancreatic necrosis virus in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cultured in cages in the Black Sea // Aquaculture Research. 2012. Vol. 43. P. 1550—1556. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2011.02959.x/
  11. Viral Encephalopathy and Retinopathy in groupers (Epinephelus spp.) in southern Italy: a threat for wild endangered species? / Vendramin N. et al. // BMC Veterinary Research. 2013. Vol. 9. P. 20. doi:10.1186/1746-6148-9-20.
  12. Viral encephalopathy and retinopathy in aquaculture: a review / Doan Q. K. et al. // Journal of Fish Diseases. 2017. Vol. 40 (5). P. 717—742. ff10.1111/jfd.12541ff. ffhal-01533903f.
  13. The current state of the turbot, Scophthalmus maximus (Linnaeus, 1758), population in the northwestern part of the Black Sea / Hulak B. et al. // Fisheries & Aquatic Life. 2021. Vol. 29 (3). P. 164—175. https://doi.org/10.2478/aopf-2021-0018.
  14. Rud Yu., Maistrenko M., Buchatsky L. Characterization of an infectious pancreatic necrosis virus from rainbow trout fry (Onhorhynchus mykiss) in West Ukraine // Virologica Sinica. 2015. Vol. 30 (3). P. 231—233. doi: 10.1007/s12250-014-3513-z.
  15. Genetic population structure of marine viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) / Snow M. et al. // Dis. Aquat. Org. 2004. Vol. 61. P. 11—21. doi: 10.3354/dao061011.
  16. Polymerase chain reaction (PCR) amplification of RNA of striped jack nervous necrosis virus (SJNNV) / Nishizawa T. et al. // Dis. Aquat. Org. 1994. Vol. 18. P. 103—107. https://doi.org/10.3354/dao018103 
  17. Viral Encephalo-Retinopathy Interlaboratory Proficiency Test (VER-IPT): results from two years experience / Toffan A. et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2021. Vol. 41(2). P. 59.
  18. European Commission. Regulation (EU) 2016/429 of the European Parliament and of the Council of 9 March 2016 on transmissible animal diseases and amending and repealing certain acts in the area of animal health (Animal Health Law). URL: https://eur-lex.europa.eu/eli/reg/2016/429/oj (accessed : 01.03.2022).
  19. OIE Aquatic Animal Health Code (the 22nd edition of the Aquatic Code 2019) // World Organisation for Animal Health. Paris, France, 2019. URL: http://www.oie.int (accessed : 01.03.2022).
  20. A new Animal Health Strategy for the European Union (2007-2013) where “Prevention is better than cure” : Communication from the commission to the council, the European parliament, the European economic and social committee and the committee of the regions. [S. l.] : European Commission, 2007.
  21. First genetic characterization of sturgeon mimiviruses in Ukraine / Rud Y. et al. // J. Fish Dis. 2020. Vol 43(11). P. 1391—1400. https://doi.org/10.1111/jfd.13239.
  22. Experimental infection of brown trout (Salmo trutta), zebrafish (Danio rerio), and swan mussel (Anodonta cygnea) with infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) / Rud Yu. et al. // Agricultural Science and Practice. 2020. Vol. 7 (3). P. 31—39. doi: https://doi.org/10.15407/agrisp7.03.031.
  23. Бучацкий Л. П., Рудь Ю. П., Матвиенко Н. Н. Вирусные инфекции осетров и лососей. Киев : ДИА, 2020. 240 с.
  24. Investigation of starry sturgeon Acipencer stellatus in the Black sea and Sea of Azov for AcIV-E infection / Rud Yu. P. et al. // Marine Ecological Journal. 2021. Vol.  2. P.  65—70. doi: https://doi.org/10.47143/1684-1557/2021.2.06.
  25. Fernández-González R., Pérez-Pérez M., Garza-Gil M. D. An analysis of production factors for Galician-farmed turbot: From boom to stagnation // Aquaculture Economics & Management. 2021. Vol. 25(3). P. 320—338. doi: 10.1080/13657305.2020.1840659.
  26. Aydin I., Sahin T. Reproductive performance of turbot (Psetta maxima) in the southeastern Black Sea // Turk J Zool. 2011. Vol. 35(1). P. 109—113. doi:10.3906/zoo-0905-26.
Головна2022№ 2/2022 (60)2022_02-084_098-Rud