pdf35

Fisheries Science of Ukraine, 2026; 2(76): 148-170
DOI: https://doi.org/10.61976/fsu2026.02.148
UDC 639.371.52:597.42:591.3

Received: 16.04.2026
Received in revised form: 21.05.2026
Published: 30.06.2026

Опірність організму та рибницькі показники молоді стерляді (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) за дії лляної олії в раціоні

Ю. М. Забитівський, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0001-8300-0177, Інститут екології Карпат НАН України, м. Львів
О. І. Віщур, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0003-4503-3896, Інститут біології тварин НААН, Львівський національний університет ветеринарної медицини та біотехнологій ім. С. З. Ґжицького, м. Львів
Я. В. Тучапський, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0001-7444-119X, Інститут рибного господарства Національної академії аграрних наук України, м. Київ
М. Ю. Симон, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0002-7295-8790, Інститут рибного господарства Національної академії аграрних наук України, м. Київ
І. Є. Соловодзінська, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID 0000-0001-9233-1488, Львівський національний університет ветеринарної медицини та біотехнологій ім. С. З. Ґжицького, м. Львів

Мета. Оцінити вплив лляної олії, якою збагачували живі корми та комерційний стартовий комбікорм, на ріст, виживаність і показники Т- і В-клітинної та гуморальної ланок адаптивного імунітету молоді стерляді (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758).

Методика. Дослідження проводили у два етапи, тривалістю 28 та 50 діб відповідно. На першому етапі було задіяно 2 дослідні та 1 контрольну групу риб, на другому — 1 дослідну та 1 контрольну. На першому етапі личинок і мальків стерляді впродовж 28 діб годували наупліями Artemia salina, збагаченими ліпосомальним препаратом лляної олії власного виготовлення, у концентраціях 0,5 та 1,0 мл/л. На другому етапі молодь переводили на стартовий комбікорм, із введенням до складу лляної олії в кількості 0,1% від маси згодовуваного корму. Впродовж експериментів визначали темпи росту, виживаність та показники Т- і В-лімфоцитарної ланки імунітету. Ліпосомальний препарат готували з використанням вітаміну Е та лецитину на ультразвуковому диспергаторі за частоти 35 Гц. Усі фізико-хімічні умови вирощування риб відповідали нормативним значенням для рециркуляційних аквакультурних систем (РАС) із стерляддю.

Результати. Встановлено, що застосування лляної олії сприяло покращенню росту та виживаності молоді стерляді. Через 28 діб середня маса риб із дослідних груп перевищувала показники контролю на 10,7 та 27,7%, а їхня виживаність була вищою на 71,7 та 76,2%. Додавання лляної олії не викликало суттєвих змін загальної кількості Т- та В-лімфоцитів, проте сприяло збільшенню частки функціонально активних високоавідних Т-лімфоцитів і зменшенню кількості клітин із низькою рецепторною активністю. Отримані результати узгоджуються із сучасними уявленнями про роль α-ліноленової та лінолевої кислот у формуванні структурно-функціонального стану мембран імунокомпетентних клітин, регуляції експресії мембранних рецепторів та підтриманні імунного гомеостазу.

Наукова новизна. Вперше досліджено вплив ліпосомального препарату лляної олії на ріст, виживаність та функціональний стан Т- і В-клітинної і гуморальної ланок специфічного імунітету молоді стерляді.

Практична значущість. Результати можуть бути використані для оптимізації технологій вирощування молоді осетрових риб та підвищення їх життєстійкості в умовах інтенсивної аквакультури.

Ключові слова: осетрівництво, аквакультура, годівля риб, рециркуляційні аквакультурні системи (РАС), молодь осетрів, виживаність молоді.

REFERENCES

  1. Korniienko, V. O. (2004). Optimization of the main technological parameters when growing larvae of Russian sturgeon. Candidate’s thesis. Kyiv. (in Ukrainian).
  2. Hoseinifar, S. H., Mirvaghefi, A., & Merrifield, D. L. (2011). The effects of dietary inactive brewer`s yeast Saccharomyces cerevisiae var. ellipsoideus on the growth, physiological responses and gut microbiota of juvenile beluga (Huso huso). Aquaculture, 318(1–2), 90–94.
  3. Simon, M., Zabytivskyi, Yu., & Hrytsyniak, I. (2018). Influence of inactivated baker’s yeast on growth potential of Russian sturgeon Acipenser gueldenstaedtii (Brandt) fingerling. Fisheries Science of Ukraine, 3, 103–111. https://doi.org/10.15407/fsu2018.03.103
  4. Hoseinifar, S. H., Ringoe, E., Masouleh, A., & Esteban, M. (2014). Probiotic, prebiotic and synbiotic supplements in sturgeon aquaculture: a review. Reviews in Aquaculture, 6, 1–14.
  5. Kamaszewski, M., Ostaszewska, T., Prusinska, M., Kolman, R., Chojanacki, M., Zabytivskij, J., Jankowska, B., & Kasprzak, R. (2014). Effects of Artemia sp. with Essential Fatty Acids on Functional and Morfological Aspects of the Digestive System in Acipenser gueldenstaedtii Larvae. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 14, 929–938. https://doi.org/10.4194/1303-2712-v14_4_12
  6. Matvienko, N., Montvydiene, D., & Zabytivskyi, Yu. (2023). Use of Levamizole for growing of the juvenile sturgeons. Proceedings of Aquaculture Europe 2023 Conference: Balanced Diversity in Aquaculture Development, 18–21 September 2023, Vienna, Austria, 886–887.
  7. Hцhne, C., Prokopov, D., Kuhl, H., Du, K., Klopp, C., Wuertz, S., Trifonov, V., & Stцck, M. (2021). The immune system of sturgeon and paddlefish (Acipenseriformes): a review with new data from a chromosome-scale sturgeon genome. Review in Aquaculture, 13, 1709–1729. https://doi.org/10.1111/raq.12542 
  8. Zabytivskyi, Yu., Koryliak, M., Bobeliak, L., & Kachai, H. (2025). Effect of shiitake (Lentinula edodes) mushroom extract on the growth and resistance of the Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1856) juveniles. Fisheries Science of Ukraine, 2(72), 173-191. https://doi.org/10.61976/fsu2025.02.173
  9. Jarmolowicz, S., Prusinska, M., Wis­zniew­ski, G., Schilz, P., Kamaszewski, M., Szudrowicz, H., Wiechetek, W., Kawalski, K., Duda, A., Sikorska, J., & Kapusta, A. (2024). Effect of selenomethionine on the growth, oxidative potential, digestive ebzyme activity, and immune status of juvenile sterlet (Acipenser ruthenus). Fisheries & Aquatic life, 32(2), 89–101. https://doi.org/10.2478/aopf-2024-0008 
  10. Liu, G., Zhu, L., Wu, Y., Wang, C., Wang, Y., Zheng, Q., Tian, M., Wang, H., & Chen, Y.-H. (2023). Herbal active small molecule as an immunomodulator for potrntial application on resistance of common carp against SVCV infection. Fish and Shellfish Immunology, 137, 108782. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2023.108782
  11. Zabytivskyi, Y., Koryliak, M., Bernakevych, O., Vishchur, O., Solovodzinska, I., Symon, M., Momut, V., & Savchuk, L. (2025). The effect of Sviteco PWC probiotic product on growth, physiological and biochemical status and nonspecific resistance of sturgeon fish juveniles. AACL Bioflux, 18(1), 466–476. bioflux.com.ro Retrieved from: https://bioflux.com.ro/docs/2025.466-476.pdf
  12. Tocher, D. (2010). Fatty acid requirements in ontogeny of marine and freshwater fish. Aquaculture Research, 41(5), 717–732.
  13. Turchini, G. M., Torstensen, B. E., & Ng, W.-K. (2009). Fish oil replacement in finfish nutrition. Review in Aquaculture, 1, 10–57. https://doi.org/10.1111/j.1753-5131.2008.01001.x 
  14. Cleveland, B. J., Francis, D. S., & Turchini, G. M. (2012). Echium oil provides no benefit over linseed oil for (n-3) long-chain PUFA biosynthesis in rainbow trout. The Journal of Nutrition, 142(8), 1449–1455. https://doi.org/10.3945/jn.112.161497
  15. Wang, X., Li, Q., Wang, J., Li, E., Qin, J. G., & Chen, L. (2018). Effect of dietary alpha-linolenis acids on growth performance, lipid metabolism and antioxidant responses of juvenile russian sturgeon Acipenser gueldenstaedtii. Aquaculture Nutrition, 25(1), 184–193. https://doi.org/10.1111/anu.12842
  16. Yoon, G. R., Amjad, H., Weinrauch, A. M., Laluk, A., Suh, M., & Anderson, W. G. (2022). Long-term effects of EPA and DHA enriched diets on digestive ebzyme activity, aerobic scope, growth and survival in age-0 Lake Sturgeon (Acipenser fulvescens). Aquaculture, 552, 737972. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.737972
  17. Liu, C., Wang, J., Ma, Z., Li, T., Xing, W., Jiang, N., Li, W., Li, C., & Luo, L. (2017). Effects of totally replacing dietar fish oil by linseed oil or soybean oil on juvenile hybrid sturgeon, Acipenser baeri Brandt Ч A. schrenckii Brandt. Aquaculture Nutrition, 24(1), 184–194. https://doi.org/10.1111/anu.12546
  18. Rosas, V. T., Monserrat, J. M., Bessonat, M., Magnone, L., Romano, L. A., & Tesser, M. B. (2019). Fish oil and meal replacement in mullet (Mugil liza) diet with Spirulina (Arthrospira platensis) and linseed oil. Comparative Biochemistry and Physiology, Part C: Toxicology & Pharmacology, 218, 46–54. https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2018.12.009
  19. Ghiasi, S., Falahatkar, B., & Sajjadi, M. (2023). Effect of dietary flaxseed meal on growth, blood biochemistry, reproductive hormones and oocyte development in previtellogenic Siberian sturgeon (Acipenser baerii Brandt, 1869). Animal Feed Science and Technology, 295, 115546. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2022.115546
  20. Salem, M. O. A., Taştan, Y., Bilen, S., Terzi, E., Sцnmez, A. Y. (2023). Dietary flaxseed (Linum usitatissimum) oil supplementation affects growth, oxidative stress, immune response and diseases resistance in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish & Shellfish Immunology. 138, 108798. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2023.108798
  21. Yan, X., Dong, X., Tan, B., Zhang, S., Chi, S., Yang, Q., Liu, H., & Yang, Y. (2020). Influence of different oil sources on growth, disease resistance, immune response and immune-related gene expression on the hybrid grouper (♀Epinephelus fuscoguttatus Ч ♂ E. lanceolatu), to Vibrio parahaemolyticus challenge. Fish and Shellfish Immunology, 99, 310–321. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2020.02.025
  22. Horalskyi, L. P. (2005). Fundamentals of histological techniques and morphofunctional methods of studies in norm and pathology. Zhytomyr: Polissia (in Ukrainian).
  23. Vlizlo, V. V., Fedoruk, R. S., Ratych, I. B., Vishchur, O. I., & Sharan, M. M., et al. (2012). Laboratory research methods in biology, animal husbandry and veterinary medicine: Handbook. Lviv: SPOLOM.
  24. Kaminskyi, V. F., & Buslaieva, N. H. (2011). Basics of applied mathematical analysis in agricultural research. Guide lines. Kyiv. (in Ukrainian).
  25. Zabytivskyi, Yu., Yurchak, S., Bobyliak, L., & Hevkan, I. (2014). Effect of a liposomal preparation of vitamins A, E and organic compounds of trace elements of Zn, Se, I on the physiological state of brood carp (Cyprinus carpio) during prespawning period. Fisheries Science of Ukraine, 4, 86–94. (in Ukrainian). https://doi.org/10.15407/fsu2014.04.086
  26. Romanovych, L. V., Kurtyak, B. M., & Vishchur, O. I. (2020). Influence of vitamins E and C on the quantity and functional activity of τ- ι β-lymphocytes of blood-chicken broilers. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 11(1), 59–69. (in Ukrainian). https://doi.org/10.31548/ujvs2020.01.007
  27. Hafezieh, M., Kamarudin, M. S., Salleh, M., & Agh, N. (2009). Effect of enriched Artemia urmiana on growth, survival and composition of larval Persian sturgeon. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 9, 201–208. https://doi.org/10.4194/trjfas.2009.0212
  28. Kamaszewski, M., Wojcik, M., Ostaszewska, T., Kasprzak, R., Kolman, R., & Prusińka, M. (2014). The effect of essential fatty acid (EFA) enrichment of Artemia sp. nauplii on the enzymatic activity of Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus Mitchill, 1815) larvae– preliminary study. Journal of Applied Ichthyology, 30(6), 1256–1258. https://doi.org/10.1111/jai.12561
  29. Jalali, M. A., Hosseini, S. A., & Imanpour, M. R. (2008) Effect of vitamin E and highly unsaturated fatty acid-enriched Artemia urmiana on growth performance, survival and stress resistance of Beluga (Huso huso) larvae. Aquaculture Research, 39, 1286–1291. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.01992.x 
  30. Soyland, E., Nenseter, M. S., Braathen, L., & Drevon, C. A. (1993). Very long chain n-3 and n6 polyunsaturated fatty acids inhibit proliferation of human T-lymphocytes in vitro. European Journal of Clinical Investigation, 23(2), 112–121. https://doi.org/10.1111/j.1365-2362.1993.tb00750.x
  31. Collison, L. W., Collison, R. E., Murphy, E. J., & Jolly, C. A. (2005). Dietary n-3 polyunsaturated fatty acids increase T-lymphocyte phospholipid mass and acyl-CoA binding protein expression. Lipids, 40(1), 81–87. https://doi.org/10.1007/s11745-005-1362-8
  32. Cao, J., Xu, H., Yu, Y., & Xu, Z. (2023). Regulatory roles of cytokines in T and B lymphocytes-mediated immunity in teleost fish. Developmental and Comparative Immunology, 144, 104621. https://doi.org/10.1016/j.dci.2022.104621
  33. Patted, P., Masareddy, R., Patil, A., Kanabargi, R., & Bhat, C. T. (2024). Omega-3 fatty acids: a comprehensive scientific review of their sources, functions and health benefits. Future Journal of Pharmaceutical Sciences, 10, 94. https://doi.org/10.1186/s43094-024-00667-5
Головна2026№ 2/2026 (76)2026_02-148_170-Zabytivskyi