pdf35

Fisheries Science of Ukraine, 2026; 2(76): 124-147
DOI: https://doi.org/10.61976/fsu2026.02.124
UDC [639.3.043.13:636.087.74]:639.371.52

Received: 14.04.2026
Received in revised form: 28.05.2026
Published: 30.06.2026

Оцінка перспектив використання виноградних вичавок в годівлі коропа (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758)

О. М. Запорожець, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0009-0004-6692-7906, Інститут рибного господарства Національної академії аграрних наук України, м. Київ
О. В. Дерень, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0002-8246-9456, Інститут рибного господарства Національної академії аграрних наук України, м. Київ

Мета. Оцінити ефективність використання виноградних вичавок у складі раціону дволіток коропа (Cyprinus carpio) за показниками росту, антиоксидантного статусу та морфофункціонального стану органів травлення.

Методика. Обʼєктом дослідження були однолітки коропа середньою початковою масою 37,7 г, яких утримували в акваріумах обʼємом 150 дм3 по 25 екз. у кожному. При цьому забезпечено оптимальні ідентичні фізико-хімічні параметри водного середовища. Сформовано контрольну і 3 дослідних групи. Експериментальна годівля комбікормом визначеного складу тривала 30 діб. До складу раціону дослідних груп вводили виноградні вичавки у кількості 0,5% — дослід 1; 1,0% — дослід 2 та 2,0% — дослід 3. Використовували загальноприйняті методи визначення показників приросту маси риб, активності антиоксидантних та травних ферментів у гепатопанкреасі та гістоморфометричних досліджень середнього відділу кишечника, екзокринного сегмента гепатопанкреаса та печінкової паренхіми.

Результати. Визначено, що введення виноградних вичавок не зумовлює суттєвих змін інтенсивності росту коропа. Встановлено покращення антиоксидантного статусу організму, що проявлялося суттєвим зниженням вмісту продуктів перекисного окиснення ліпідів — дієнових конʼюгатів — на 27–32% та ТБК-продуктів — на 7–37% в усіх дослідних групах щодо контрольної, а також значне зменшення активності супероксиддисмутази (на 18,0–47,0%), що може свідчити про зниження інтенсивності оксидативного навантаження. Отримані результати свідчать про невиразний вплив введення до складу корму нижчої концентрації виноградних вичавок (досліди 1 та 2) на морфофункціональний стан риб. Водночас, у досліді 3 показники висоти ворсинок, глибини крипт та ширини мʼязової оболонки риб були достовірно нижчими (p < 0,01) на 136,36; 24,60 та 22,11 мкм відносно контролю. В секреторному сегменті гепатопанкреаса активізувався синтез травних ферментів, у печінковій паренхімі відбувалася зміна функцій гепатоцитів у бік накопичення глікогену. На тканинному рівні у кишечнику зафіксовано актівізацію слизової оболонки, прискорення гемодинаміки, підвищення імунного статусу.

Наукова новизна. Вперше встановлено адаптогенний ефект виноградних вичавок у раціоні коропа, що проявляється зниженням оксидативного навантаження, покращенням імунітету та функції травлення без істотного впливу на темпи росту.

Практична значущість. Обґрунтувано перспективи та доцільність використання виноградних вичавок як фітогенної кормової добавки для підвищення фізіологічної стійкості організму коропа та оптимізації процесів травлення, що є актуальним завданням сучасної аквакультури.

Ключові слова: фітогенні добавки, приріст маси, антиоксидантний статус, кишечник, екзокринний сегмент гепатопанкреаса, печінкова паренхіма.

REFERENCES

  1. Ai, C., Leng, X., Luo, Z., Zhou, Z., & Ai, Q. (2025). A review of the latest advances in aquaculture nutrition research. The Journal of Nutrition, 155(10), 3267–3290. https://doi.org/10.1016/j.tjnut.2025.08.009
  2. Ruby, P., Ahilan, B., Cheryl, A., & Selvaraj, S. (2022). Recent Trends in Aquaculture Technologies. Journal of Aquaculture in the Tropics, 37(1-4), 29–36. https://doi.org/10.32381/JAT.2022.37.1-4.2
  3. Oliveira, J., Oliva-Teles, A., & Couto, A. (2024). Tracking biomarkers for the health and welfare of aquaculture fish. Fishes, 9(7), 289. https://doi.org/10.3390/fishes9070289
  4. Wegener, Henrik C. (2003). Antibiotics in animal feed and their role in resistance development. Current Opinion in Microbiology, 6(5), 439–445. https://doi.org/10.1016/j.mib.2003.09.009
  5. Ajulo, S., & Awosile, B. (2024). Global antimicrobial resistance and use surveillance system (GLASS 2022): investigating the relationship between antimicrobial resistance and antimicrobial consumption data across the participating countries. PLoS One, 19(2), e0297921. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0297921
  6. Pandey, S., Singh, G.,Verma, S., Dahiya, T., Singh, A., Shahi, S., & Tiwari, P. K. (2025). Phytotherapy as a natural alternative to antibiotics in aquaculture. Indian Journal of Animal Health, 64(1), 55–65. https://doi.org/10.36062/ijah.2025.01925
  7. Kari, Z. A., Wee, W., Hamid, N. K. A., Mat, K., Rusli, N. D., Khalid, H. N. M., Sukri, S. A. M., Harun, H. C., Dawood, M. A. O., Hakim, A. H., Khoo, M. I., Abd El-Razek, I. M., Goh, K. W., & Wei, L. S. (2022). Recent advances of phytobiotic utilization in сarp farming: A review. Aquaculture Nutrition, 1, 7626675. https://doi.org/10.1155/2022/7626675
  8. Tarasiuk, S. I., Dvoretskyi, A. I., Deren, O. V., & Zaiarko, O. I. (2015). Biological Principles of Fish Feeding. Dnipro: Adverta. (in Ukrainian).
  9. Nath, P. C., Ojha, A., Debnath, S., Sharma, M., Nayak, P. K., Sridhar, K., & Inbaraj, B. S. (2023). Valorization of Food Waste as Animal Feed: A Step towards Sustainable Food Waste Management and Circular Bioeconomy. Animals, 13(8), 1366. https://doi.org/10.3390/ani13081366
  10. Blasi, F., Trovarelli, V., Mangiapelo, L., Ianni, F., & Cossignani, L. (2024). Grape Pomace for Feed Enrichment to Improve the Quality of Animal-Based Foods. Foods, 13(22), 3541. https://doi.org/10.3390/foods13223541
  11. Perra, M., Bacchetta, G., Muntoni, A., De Gioannis, G., Castangia, I., Rajha, H. N., Manca, M. L., & Manconi, M. (2022). An outlook on modern and sustainable approaches to the management of grape pomace by integrating green processes, biotechnologies and advanced biomedical approaches. Journal of Functional Foods, 98, 105276. https://doi.org/10.1016/j.jff.2022.105276
  12. Mahmoodi, B., Aberoumand, A., Ziaei-nejad, S., & Seyyedi, S. (2023). Effects of Diets Containing Grape Pomace on the Growth, Nutrition Indices, and the Quality Traits of Common Carp (Cyprinus carpio). Food Sci. Nutr., 11, 6660–6669. https://doi.org/10.1002/fsn3.3614
  13. Barbacariu, C.-A., Dоrvariu, L., Șerban, D. A., Rоmbu, C. M., Horhogea, C. E., Dumitru, G., Todirașcu-Ciornea, E., Lungoci, C., & Burducea, M. (2024). Evaluating the Use of Grape Pomace in Cyprinus carpio Nutrition: Effects on Growth, Biochemistry, Meat Quality, Microbiota, and Oxidative Status. Fishes, 9(6), 219. https://doi.org/10.3390/fishes9060219
  14. Tarricone, S., Iaffaldano, N., Colonna, M.A., Giannico, F., Selvaggi, M., Caputi Jambrenghi, A., Cariglia, M., & Ragni, M. (2023). Effects of Dietary Red Grape Extract on the Quality Traits in Juvenile European Sea Bass (Dicentrarchus labrax L.). Animals, 13(2), 254.  https://doi.org/10.3390/ani13020254
  15. Martнnez-Antequera, F. P., Molina-Roque, L., de las Heras, V., Mancera, J. M., Martos-Sitcha, J. A., & Moyano, F. J. (2023). Feed Supplementation with Winery By-Products Improves the Physiological Status of Juvenile Liza Aurata during a Short-Term Feeding Trial and Hypoxic Challenge. Aquac. Rep., 31, 101667. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2023.101667
  16. Martнnez-Antequera, F. P., Simу-Mirabet, P., de las Heras, V., Romбn, M., Mancera, J. M., Martos-Sitcha, J. A., & Moyano, F. J. (2024). Grape Pomace in Diets for European Sea Bass: Influence on Oxidative Status, Intestinal Microbiota, and Fillet Quality. Aquac. Int., 32, 7771–7788.  https://doi.org/10.1007/S10499-024-01540-1
  17. Bullon, N., Seyfoddin, A., Hamid, N., Manivannan, M., & Alfaro, A.C. (2024). Effects of insect meal and grape marc in the nutritional profile, growth, and digestibility of juvenile New Zealand farmed abalone. Aquac. Int., 32, 1507–1536. https://doi.org/10.1007/s10499-023-01227-z
  18. Sherman, I. M., & Rylov, V. H. (2005). Technology of fish farming production. Kyiv: Vyshcha osvita (in Ukrainian).
  19. Dubinina, E. E., Salnikova, L. A., & Efimova, L. F. (1983). Activity and isoenzyme spectrum of superoxide dismutase of erythrocytes and human blood plasma. Laboratornoe delo, 10, 30–33. (in Russian).
  20. Koroljuk, M. A., Ivanova, L. I., & Majorova, I. G. (1988). Method for determining catalase activity. Laboratornoe delo, 1, 16–19. (in Russian).
  21. Method for determination of diene conjugation of unsaturated higher fatty acids. (1977). Sovremennye metody v biohimii, 63–64. (in Russian).
  22. Korobejnikova, E. N. (1989). Modification of determination of products of lipid peroxidation in reaction with thiobarbituric acid. Laboratornoe delo, 7, 8–9. (in Russian).
  23. Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem, 72, 248–254.
  24. Zhyla, M. I. (2011). Laboratory studies during clinical trials of veterinary medicinal products. Scientific Messenger of Stepan Gzhytskyi National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies, 13, 4(1), 128–134. (in Ukrainian).
  25. Rotkiewicz, T. (1990). Patomorfologiczne metody badania zwierzat. Olsztyn: ART.
  26. Kotsiumbas, I. Ya., Zhyla, M. I., Shkodiak, N. V., & Lisova, N. Ye. (2014). Immunotoxicological control of veterinary drugs and feed additives. Lviv: DNDKI. (in Ukrainian).
  27. Horalskyi, L. P. (2005). Fundamentals of histological techniques and morphofunctional methods of studies in norm and pathology. Zhytomyr: Polissia (In Ukrainian).
  28. Mumford, S., Heidel, J., Smith, C., Morrison, J., MacConnell, B., & Blazer, V. (2007). Fish Histology and Histopathology. Shepherdstown, West Virginia: U.S. Fish and Wildlife Service — National Conservation Training Center.
  29. Kozii, M. S., Sherman, I. M., & Lianzberh, O. V. (2011). Atlas of histology and embryology of commercial fish of Ukraine. Kherson: Hrin D.S. (in Ukraini­an).
  30. Kaminskyi, V. F., & Buslaieva, N. H. (2011). Basics of applied mathematical analysis in agricultural research. Guide lines. Kyiv. (in Ukrainian).
  31. Martinez-Alvarez, R. M., Morales, A. E., & Sanz, А. (2005). Antioxidant defenses in fish: biotic and abiotic factors. Rev. Fish Biol. Fish, 15, 75–88. https://doi.org/10.1007/s11160-005-7846-4
  32. Kozii, M. S. (2014). Microanatomical organization of fish organs and tissues in natural and changing conditions of existence. Extended abstract of candidate’s thesis. Kyiv. (in Ukrainian).
  33. Kozii, M. S. (2011). Histomorphological features of the ichthyofauna of Southern Ukraine. Kherson: Oldi-plius. (in Ukrainian).
  34. Firmino, J. P, Galindo-Villegas, J., Reyes-Lуpez, F. E., & Gisbert, E. (2021). Phytogenic Bioactive Compounds Shape Fish Mucosal Immunity. Front. Immunol, 12, 695973.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.695973
Головна2026№ 2/2026 (76)2026_02-124_147-Zaporozhets