pdf35

Ribogospod. nauka Ukr., 2025; 2(72): 257-276
DOI: https://doi.org/10.61976/fsu2025.02.257
UDC 639.517.085:019.912“1868”

Вирощування та годівля австралійського червоноклешневого рака (Cherax quadricarinatus von Martens, 1868). Тематична бібліографія

Н. Є. Гриневич, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0001-7430-9498, Білоцерківський національний аграрний університет, м. Біла Церква
А. О. Слюсаренко, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0002-1896-8939, Білоцерківський національний аграрний університет, м. Біла Церква
О. А. Хом’як, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0003-3010-6757, Білоцерківський національний аграрний університет, м. Біла Церква
В. С. Жарчинська, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0002-5823-9095, Білоцерківський національний аграрний університет, м. Біла Церква

Мета. Узагальнення та систематизація наукових джерел, присвячених вирощуванню та годівлі австралійського червоноклешневого рака (Cherax quadricarinatus von Martens, 1868).

Методика. Методика складання тематичної бібліографії базувалася на ретельному пошуку, систематизації та аналізі наукових джерел.

Результати. У результаті проведеної роботи було зібрано, систематизовано та проаналізовано значний масив літературних джерел, що висвітлюють особливості вирощування та годівлі австралійського червоноклешневого рака Cherax quadricarinatus. Бібліографія містить 109 публікацій, розміщених у алфавітному порядку та описаних згідно з вимогами ВАК, відповідно до ДСТУ 8302:2015 «Інформація та документація. Бібліографічне посилання. Загальні положення та правила складання», із урахуванням поправок (код УКНД 01.140.40).

Практична значимість. Перелік може бути корисним для студентів, викладачів і науковців доступом до актуальних публікацій для використання в навчальному процесі та наукових роботах.

Ключові слова: аквакультура, Cherax quadricarinatus, відтворення, вирощування, раціон, живлення, годівля.

ЛІТЕРАТУРА

  1. A review of alternative pond harvesting schedules for male and female redclaw crayfish Cherax quadricarinatus, reared in intensive monosex commercial conditions: a stochastic bioeconomic approach / Hernández-Llamas A. et al. // Reviews in Aquaculture. 2020. Vol. 12(2). P. 626—639. https://doi.org/10.1111/raq.12343.
  2. A study on Nitrogen and Phosphorus budgets in a polyculture system of Oreochromis niloticus, Aristichthys nobilis, and Cherax quadricarinatus / Liu B. et al. // Water. 2023. Vol. 15(15). https://doi.org/10.3390/w15152699.
  3. A study on primary diets for juveniles of red claw crayfish Cherax quadricarinatus / Cheng S. et al. // Aquaculture Research. 2020. Vol. 52(5). P. 2138—2145. https://doi.org/10.1111/are.15066.
  4. Aeration level in HDPE-lined nursery ponds that optimizes yield and production cost of preadult redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus / Naranjo-Páramo J. et al. // Aquacultural Engineering. 2022. Vol. 96. 102221. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2021.102221.
  5. Agusrinal A., Tolanamy E. S., Septiantoro R. Pengaruh pemberian vitamin dan lysin pada pakan terhadap gonad lobster air tawar capit merah (Cherax quadricarinatus) // Jurnal Media Akuatika. 2022. Vol. 7(2). P. 20. https://doi.org/10.33772/jma.v7i2.24770.
  6. All-female crayfish populations for biocontrol and sustainable aquaculture / Shaked S. A. et al. // Aquaculture. 2024. Vol. 580(2). 740377. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2023.740377.
  7. Amrullah A., Wahidah W. Immune response and growth performance of crayfish Cherax quadricarinatus fed with supplementary diet of synbiotic // Jurnal Akuakultur Indonesia. 2019. Vol. 18(1). P. 33—45. https://doi.org/10.19027/jai.18.1.33-45.
  8. Analysis of seven populations of cultured redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus, using newly developed microsatellite markers / Wei J. et al. // Aquaculture Reports. 2024. Vol. 35. 102024. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2024.102024.
  9. Asher A. Converging innovative technologies in intensive production of redclaw crayfish seedstock // Hatchery Feed & Management. 2020. № 8. P. 12—15.
  10. Biofloc-based co-culture systems of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) with different carbon-nitrogen ratios / Azhar M. H. et al. // Aquaculture International. 2020. Vol. 28. P. 1293—1304. https://doi.org/10.1007/s10499-020-00526-z.
  11. Biological, nutritional, and hematoimmune response in juvenile Cherax quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae) fed with probiotic mixture / Méndez-Martínez Y. et al. // Journal MVZ Cordoba. 2021. Vol. 27(3). e2578. https://doi.org/10.21897/rmvz.2578.
  12. Chu J. H., Huang T. W. Evaluation of black soldier fly larvae meal on growth, body composition, immune responses, and antioxidant capacity of redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) juveniles // Animals. 2024. Vol. 14(3). P. 404. https://doi.org/10.3390/ani14030404.
  13. Culture model of Cherax quadricarinatus: temporary shelter in shed and pond culture / Cheng S. et al. // Aquaculture. 2020. Vol. 526. P. 1—8. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735359.
  14. Determining suitable thermal regimes for early instar redclaw juveniles, Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) (Decapoda, Parastacidae), for a proposed nursery phase / Rigg D. P. et al. // Freshwater Crayfish. 2021. Vol. 26(1). P. 17—23. http://dx.doi.org/10.5869/fc.2021.v26-1.17.
  15. Diet impact on the reproductive characters of male red claw Cherax quadricarintus during the juvenile-adult transition / Mutti L. D. et al. // Animal Feed Science and Technology. 2024. Vol. 307. 115830. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2023.115830.
  16. Dietary supplementations modulate the physiological parameters, fatty acids profile and the growth of red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) / Shehata A. I. et al. // Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. 2022. Vol. 107(1). P. 308—328. https://doi.org/10.1111/jpn.13704.
  17. Differences in intestinal microbial composition between red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) and red swamp crayfish (Procambarus clarkii) cultured in pond / Chen H. et al. // Fishes. 2022. Vol. 7(5). P. 241. https://doi.org/10.3390/fishes7050241.
  18. Dynamics of commercial size interval populations of female redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) reared in gravel-lined ponds: a stochastic approach / Naranjo J. et al. // Aquaculture. 2017. Vol. 484. P. 82—89. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.10.044.
  19. Effect of crossbreeding three divergent populations on the juvenile production and rearing performance of the redclaw crayfish Cherax quadricarinatus / Hernández-Gurrola J. A. et al. // Aquaculture. 2020. Vol. 527. P. 735420. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735420.
  20. Effect of food restriction on female reproductive performance in the redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (Parastacidae, Decapoda) / Castillo Díaz F. et al. // Aquaculture Research. 2017. Vol. 48(8). P. 4228—4237. https://doi.org/10.1111/are.13244.
  21. Effect of showing density and shelter on the survival and growth of freshwater losbter seeds (Cherax quadricarinatus) / Andriyeni A. et al. // Jurnal Agroqua. 2023. Vol. 21(1). P. 182—190. https://doi.org/10.32663/ja.v21i1.3608.
  22. Effects of aquaculture water color on survival, growth and body color of Cherax quadricarinatus juveniles / Liao X. et al. // South China Fisheries Science. 2022. Vol. 18(1). P. 77—83. https://doi.org/10.12131/20210128.
  23. Effects of cold acclimation on the survival, feeding rate, and non-specific immune responses of the freshwater red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) / Wu D-L. et al. // Aquaculture International. 2018. Vol. 26(2). P. 557—567. https://doi.org/10.1007/s10499-018-0236-4.
  24. Effects of dietary chitosan oligosaccharide on the growth, intestinal microbiota and immunity of juvenile red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) / Zhang Z-L. et al. // Fish and Shellfish Immunology. 2024. Vol. 145. 109288. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2023.109288.
  25. Effects of dietary octacosanol supplementation on growth, feed utilization, and physiological and molecular responses of red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) / Alhoshy M. et al. // Aquaculture International. 2024. Vol. 32(5). P. 5461—5494. https://doi.org/10.1007/s10499-024-01433-3.
  26. Effects of dietary plant protein sources intake on growth, digestive enzyme activity, edible tissue nutritional status and intestinal health of the omnivorous redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus / Jiang Z. et al. // The British Journal of Nutrition. 2023. Vol. 130(6). P. 978—995. https://doi.org/10.1017/S0007114522004044.
  27. Effects of different conditions on the artificial incubation effect and physiological indexes of redclaw crayfish eggs / Cheng S. et al. // Heliyon. 2023. Vol. 9(11). https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e20795.
  28. Effects of different dietary protein energy ratios on growth, carcass amino acid and fatty acid profile of male and female Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) pre-adults / Méndez-Martínez Y. et al. // Aquaculture. Nutrition. 2021. Vol. 27. P. 2481—2496. https://doi.org/10.1111/anu.13379.
  29. Effects of disinfectants, sponge densities, water circulation rates, and vibration frequency on the artificial incubation of redclaw crayfish embryos / Shun C. et al. // Aquaculture. 2023. Vol. 570. 739374. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2023.739374.
  30. Effects of photoperiod on survival, growth, physiological, and biochemical indices of redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) juveniles / Nie X. et al. // Animals. 2024. Vol. 14(3). P. 411. https://doi.org/10.3390/ani14030411.
  31. Effects of rice-crayfish integrated model on root exudates and microorganisms of rice during grain filling / Tao X. et al. // Journal of Fisheries of China. 2022. Vol. 46. P. 2122—2133.
  32. Effects of stocking density on the growth performance, mitophagy, endocytosis and metabolism of Cherax quadricarinatus in integrated rice-crayfish farming systems / Dong Y. et al. // Frontiers in physiology. Vol. 13. 1040712. https://doi.org/10.3389/fphys.2022.1040712.
  33. Estimating production costs of preadult redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus, reared in a commercial nursery system: a stochastic bioeconomic approach / Núñez-Amao L. et al. // Journal of the World Aquaculture Society. 2019. Vol. 50(1). P. 172—185. https://doi.org/10.1111/jwas.12554.
  34. Evaluation of dietary essential amino acid supplementation on growth, digestive capacity, antioxidant, and intestine health of the juvenile redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus / Jiang Z. et al. // Aquaculture Nutrition. 2024. https://doi.org/10.1155/2024/8767751.
  35. Evaluation of different natural foods on maturation of freshwater crayfish (Cherax quadricarinatus) / Fatwana N. et al. // Acta Aquatica: Aquatic Sciences Journal. 2021. Vol. 8(3). P. 197—200. https://doi.org/10.29103/aa.v8i3.6030.
  36. Evaluation of four practical diets on the growth and survival of juvenile redclaw, Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) / Rigg D. P. et al. // Freshwater Crayfish. 2021. Vol. 26(1). P. 1—8. https://doi.org/10.5869/fc.2021.v26-1.1.
  37. Evaluation of the role of soybean lecithin, egg yolk lecithin, and krill oil in promoting ovarian development in the female redclaw crayfish Cherax quadricarinatus / Xu C. et al. // Aquaculture Nutrition. 2023. 6925320. https://doi.org/10.1155/2023/6925320.
  38. Expression of reproduction and antioxidant-related genes in crayfish Cherax quadricarinatus fed with dietary feed additives / Shehata A. I. et al. // Aquaculture International. 2023. Vol. 30(2). P. 699—720. https://doi.org/10.1007/s10499-021-00816-0.
  39. Faiz A., Danakusumah E., Dhewantara Y. L. The effectiveness in different density of freshwater crayfish seed (Cherax quadricarinatus) on growth and survival rate by recirculation system // Jurnal Ilmiah Satya Minabahari. 2021. Vol. 6(2). P. 56—70. https://doi.org/10.53676/jism.v6i2.148.
  40. Feasibility of compensatory growth in early juveniles of “red claw” crayfish Cherax quadricarinatus under high density conditions / Stumpf L. et al. // Aquaculture. 2019. Vol. 510. P. 302—310. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.05.053.
  41. Feed enrichment with amylolytic lactic acid bacteria to stimulate the growth of freshwater crayfish (Cherax quadricarinatus) / Dahlia D. et al. // Aquacultura Indonesiana. 2018. Vol. 19(1). P. 33—37. http://dx.doi.org/10.21534/ai.v19i1.114.
  42. First molecular identification of Craspedella pedum (Cannon and Sewell, 1995) infestation on wild and cultured Cherax quadricarinatus in Malaysian freshwaters / Azri-Shah N. et al. // Regional Studies in Marine Science. 2023. Vol. 63. 103028. https://doi.org/10.1016/j.rsma.2023.103028.
  43. Freshwater lobster cultivation (Cherax quadricarinatus): post Covid-19 traumatic healing and economic revitalization / Refiadi G. et al. // Community Empowerment. 2022. Vol. 7(10). P. 1787—1796. https://doi.org/10.31603/ce.7955.
  44. From fish-processing waste to feed additives for crayfish / Rodriguez Y. E. et al. // Journal of the World Aquaculture Society. 2019. Vol. 50(5). P. 954—968. https://doi.org/10.1111/jwas.12585.
  45. Genetic diversity of divergent redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (Von martens, 1868) populations evaluated to initiate a breeding program in Mexico / Max-Aguilar A. et al. // Latin American Journal of Aquatic Research. 2021. Vol. 49(2). P. 272—279. https://doi.org/10.3856/vol49-issue2-fulltext-2630.
  46. Growth and health status of the red claw crayfish, Cherax quadricarinatus, fed diets with four typical plant protein sources as a replacement for fish meal / Qian D. et al. // Aquaculture Nutrition. 2021. Vol. 27(3). P. 795—806. https://doi.org/10.1111/anu.13224.
  47. Growth and intestinal health of the red claw crayfish, Cherax quadricarinatus, reared under different salinities / Liu S. et al. // Aquaculture. 2020. Vol. 524. 735256. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735256.
  48. Growth and survival rate of freshwater lobster (Cherax quadricarinatus) fed different forage feed / Samad A. P. A. et al. // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2022. Vol. 956. https://doi.org/10.1088/1755-1315/956/1/012006.
  49. Growth of the fresh water lobster Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868) feed on tutut Jawa Filopaludina javanica (Von Dem Busch, 1844) / Mamonto E. W. et al. // Budidaya Perairan. 2023. Vol. 11(1). P. 10—16. https://doi.org/10.35800/bdp.11.1.2023.42566.
  50. Growth performance, physiological and antioxidant capacity responses to dietary fish meal replacement with insect meals for aquaculture: a case study in red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) / Wang T. et al. // Aquaculture Research. 2022. Vol. 53(10). P. 3853—3864. https://doi.org/10.1111/are.15892.
  51. Growth, antioxidant capacity, intestine histology and lipid metabolism of juvenile red claw crayfish, Cherax quadricarinatus, fed different lipid sources / Chen C. et al. // Aquaculture Nutrition. 2021. Vol. 27(1). P. 261—273. https://doi.org/10.1111/anu.13183.
  52. Hrynevych N. Ye., Zharchynska V. S. Innovative directions of the biotechnology of growing Cherax quadricarinatus the aquaculture of Ukraine // Achievements and research prospects in animal husbandry and veterinary medicine : Scientific monograph. Riga, Latvia : Baltija Publishing. P. 221—235. https://doi.org/10.30525/978-9934-26-316-3-11.
  53. Immersion in sea cucumber’s steroid extract to increase male production of juvenile freshwater crayfish / Susanto G. N. et al. // Fisheries and Aquatic Sciences. 2023. Vol. 26(1). P. 48—57. https://doi.org/10.47853/FAS.2023.e4.
  54. Impact of low-cost diets on maturation of the red claw crayfish Cherax quadricarinatus: an integrative approach during a long-term study / Greco L. S. L. // Aquaculture. 2022. Vol. 561. 738614. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738614.
  55. Jones C. M., Valverde C. Development of mass production hatchery technology for the red claw crayfish Cherax quadricarinatus // Freshwater Crayfish. 2020. Vol. 25(1). P. 1—6. https://doi.org/10.5869/fc.2020.v25-1.001.
  56. Juliana V. A. N., Suherman S. P. Pengaruh pemberian vitamin E dengan dosis yang berbeda pada pakan terhadap pemijahan lobster air tawar (Cherax quadricarinatus) // Jurnal Ilmu Kelautan dan Perikanan Papua. 2024. Vol. 7(1). P. 97—107.
  57. Khalil M., Ramadhani I., Ayuzar E. Observation of egg incubation activity and larval development on freshwater lobster (Cherax quadricarinatus) // Acta Aquatica: Aquatic Sciences Journal. 2018. Vol. 5(1). P. 45—51.
  58. Kiriyakit A., Suwannagate K. Efficacy of four different feeds for producing hatchery raised red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) // International Journal of Agricultural Technology. 2018. Vol. 14(5). P. 693—704.
  59. Komariyah S., Haser T. F., Putriningtias A. The effectiveness of maturation stimulation method on fecundity and egg diameter of freshwater lobster (Cherax quadricarinatus) // Jurnal Agroqua: Media Informasi Agronomi Dan Budidaya Perairan. 2020. Vol. 19(2). P. 328—333. https://doi.org/10.32663/ja.v19i2.2247.
  60. Kusuma A. F., Farikhah F., Aminin A. Green mussel (Perna viridis) and silkworm (Tubifex sp.) feeding trial as an alternative feed for crayfish seeds (Cherax quadricarinatus) // Kontribusia: Research Dissemination for Community Development. 2021. Vol. 4(2). P. 430—436. https://doi.org/10.30587/kontribusia.v4i2.2661.
  61. Ladio M., Komariyah S., Putriningtias A. Effectiveness of different dosages of vitamin E on the maturation of freshwater lobster (Cherax quadricarinatus) // Acta Aquatica: Aquatic Sciences Journal. 2023. Vol. 10(1). P. 11. https://doi.org/10.29103/aa.v1i2.7419.
  62. Lobster Cherax quadricarinatus growth comparison which feeded wet and dry artificial feed / Timumun M. et al. // JAGO TOLIS : Jurnal Agrokompleks Tolis. 2022. Vol. 2(3). P. 61—66. https://doi.org/10.56630/jago.v2i3.241.
  63. Mass artificial incubation of redclaw crayfish eggs in a recirculating mechanical pulling device / Cheng S. et al. // Aquaculture Research. 2022. Vol. 53(7). P. 2923—2929. https://doi.org/10.1111/are.15807.
  64. Paputungan F., Mingkid W. M., Sambali H. Tingkat kelangsungan hidup juvenil lobster air tawar “red claw” (Cherax quadricarinatus) dengan pemberian pakan alami berbeda // Budidaya Perairan. 2021. Vol. 9(1). P. 27—32.
  65. Pengembangan apartemen Cherax quadricarinatus menuju industri akuakultur 4.0 / Razanah N. D. et al. // Prosiding Seminar Nasional Suboptimal. 2020. Vol. 8. P. 755—760.
  66. Penn J. W., Caputi N., Lestang S. Crustacean fisheries. Reference module in Earth systems and environmental sciences // Encyclopedia of Ocean Sciences. 3rd edn. 2019. Vol. 2. P. 324—337. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-409548-9.09577-4.
  67. Raharjo S. D., Saraswati E., Yuniartik M. Shelter differences on growth and survival of red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) in experimental tanks // Journal of Aquaculture and Fish Health. 2024. Vol. 13(3). P. 397—406. https://doi.org/10.20473/jafh.v13i3.55759.
  68. Redclaw, Cherax quadricarinatus sex-separated rearing strategy enhances reproduction in females / Nesa N. U. et al. // Aquaculture. 2023. Vol. 573. 739592. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2023.739592.
  69. Response of growth performance, antioxidant capacity, and gut microbiota to dietary cholesterol and lecithin in the juvenile redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus / Chen C. et al. // Aquaculture. 2024. Vol. 581. 740401. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2023.740401.
  70. Rigg D. M., Seymour J. E., Courtney R. L. A review of juvenile Redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) aquaculture: global production practices and innovation // Freshwater Crayfish. 2020. Vol. 25(1). P. 13—30. https://doi.org/10.5869/fc.2020.v25-1.013.
  71. Romano N., Zeng C. Cannibalism of Decapod crustaceans and implications for their aquaculture: a review of its prevalence, influencing factors, and mitigating methods // Reviews in Fisheries Science & Aquaculture. 2017. Vol. 25(1). P. 42—69. https://doi.org/10.1080/23308249.2016.1221379.
  72. Safir M., Tahya A. M., Asdin H. Growth of freshwater crayfish Cherax quadricarinatus which is given different fresh feed // Journal of Fisheries and Marine Research. 2023. Vol. 7(1). P. 87—95. https://doi.org/10.21776/ub.jfmr.2023.007.01.9.
  73. Safitri A. D., Mujtahidah T., Sari A. N. The effect of stocking density of freshwater lobster (Cherax quadricarinatus) the growth of gouramy (Osphronemus gouramy) in polyculture system // Asian Journal of Aquatic Sciences. 2022. Vol. 5(2). P. 200—208. https://doi.org/10.31258/ajoas.5.2.200-208 
  74. Sarma R., Saragih H. Analisis kelayakan usaha budidaya lobster air tawar (Cherax quadricarinatus) di wampu crayfish desa stabat lama barat // Jimtani. 2022. Vol. 2(5). P. 198—204.
  75. Stochastic analysis of production dynamics of male and female redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) reared under commercial intensive cultivation / Nuñez-Amao L. et al. // Reviews in Aquaculture. 2018. Vol. 10(2). P. 439—450. https://doi.org/10.1111/raq.12170.
  76. Stochastic dynamic model analysis of the effect of stocking density on the monosex production of male redclaw crayfish Cherax quadricarinatus reared in commercial gravel-lined ponds / Naranjo-Páramo J. et al. // Aquaculture. 2021. Vol. 535. 736351. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.736351.
  77. The effect of ammonia nitrogen, nitrite and pH on artificial incubation of red claw crayfish Cherax quadricarinatus eggs and growth of juveniles / Yong-chun W. et al. // Aquaculture Research. 2022. Vol. 53(10). P. 3788—3796. https://doi.org/10.1111/are.15885.
  78. The effect of aquarium color background on the survival, growth performance, body coloration, and enzymatic activity of laboratory cultured Cherax quadricarinatus juveniles / Zheng X. et al. // Aquaculture Reports. 2023. Vol. 32. 101699. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2023.101699.
  79. The exploration of artificial incubation of Cherax quadricarinatus eggs / Shun C. et al. // Aquaculture. 2020. Vol. 529. 735576. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735576.
  80. The influence of Tryptophan in artificial feed on cannibalism and growth of freshwater crayfish Cherax quadricarinatus / Trisnasari V. et al. // Sains Akuakultur Tropis: Indonesian Journal of Tropical Aquaculture. 2020. Vol. 4(1). P. 19—30. https://doi.org/10.14710/sat.v4i1.6064.
  81. The optimum lipid level for the juvenile redclaw crayfish Cherax quadricarinatus: practical diets with soybean oil as the lipid source / Chen C. et al. // Aquaculture Nutrition. 2022. 2640479. https://doi.org/10.1155/2022/2640479.
  82. The redclaw crayfish: a prominent aquaculture species with invasive potential in tropical and subtropical biodiversity hotspots / Haubrock P. J. et al. // Reviews in Aquaculture. 2021. Vol. 13(3). P. 1488—1530. https://doi.org/10.1111/raq.12531.
  83. Transcriptome analysis reveals the effect of stocking density on energy metabolism in the gills of Cherax quadricarinatus under rice-crayfish co-culture / Jia R. et al. // International journal of molecular sciences. 2023. Vol. 24(14). 11345. https://doi.org/10.3390/ijms241411345.
  84. Transcriptomic analysis across crayfish (Cherax quadricarinatus) claw regeneration reveals potential stem cell sources for cultivated crustacean meat / Musgrove L. et al. // International Journal of Molecular Sciences. 2024. Vol. 25(16). 8623. https://doi.org/10.3390/ijms25168623.
  85. Use of poultry by-product and plant protein sources in diets of redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) / Eroldoğan O. T. et al. // Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2022. Vol. 22(8). 21188. https://doi.org/10.4194/TRJFAS21188.
  86. Uses of coconut residue from coconut oil with extracted curcuma longa production for juvenile red claw crayfish feeding / Penprapai N. et al. // Applied Mechanics and Materials. 2019. Vol. 891. P. 60—65. https://doi.org/10.4028/www.scientific.net/amm.891.60.
  87. Zharchynska V., Hrynevych N. Aquaculture indicators of young Australian red-clawed crayfish Cherax quadricarinatus when fed with different feeds // Scientific Horizons. 2023. Vol. 26(9). P. 61—69. https://doi.org/10.48077/scihor9.2023.61.
  88. Біологічна цінність м’язової тканини Сherax quadricarinatus за використання у їх раціоні біомаси вермикультури / Ковтун П. В. та ін. // Сучасний розвиток технологій тваринництва. Інноваційні підходи у харчових технологіях : Міжнар. наук.-практ конф., Біла Церква, 26 жовтня 2023 р. : матер. Біла Церква, 2023. C. 15—17.
  89. Ваговий ріст та збереженість поголів’я раків різних видів залежно від щільності їх посадки / Федорович Є. І. та ін. // Розведення і генетика тварин. 2022. Вип. 63. С. 136—141. https://doi.org/10.31073/abg.63.11.
  90. Вплив годівлі на ріст та розвиток молоді австралійських червоноклешневих раків / Слюсар М. В. та ін. // Таврійський науковий вісник. 2023. Вип. 129. С. 315—320. https://doi.org/10.32851/2226-0099.2023.129.41.
  91. Гриневич Н. Є., Жарчинська В. С. Мікробіологічна оцінка корму «Decapodafood» для годівлі молоді австралійського червоноклешневого рака Cherax quadricarinatus // Таврійський науковий вісник. 2024. Вип. 135(1). С. 226—232. https://doi.org/10.32782/2226-0099.2024.135.1.30.
  92. Екдизис як необхідна складова біотехнології Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) / Гриневич Н. Є. та ін. // Modern research in world science : XI International Scientific and Practical Conference, January, 29-31, 2023 : proceed. Lviv, 2023. P. 36—40.
  93. Жарчинська В. С. Обґрунтування рецептурного складу та технології виробництва кормової добавки «Decapodafood» для вирощування молодняка австралійського червоноклешневого рака Cherax quadricarinatus // Подільський вісник: сільське господарство, техніка, економіка. 2024. Вип. 2(43). С. 44—48. https://doi.org/10.37406/2706-9052-2024-2.6.
  94. Жарчинська В. С. Удосконалення технології підрощення та розроблення кормової добавки для годівлі молоді австралійського червоноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) : дис. … д-ра філософії (PhD) : спеціальність 204. Біла Церква : БНАУ, 2024. 154 с.
  95. Жарчинська В. С., Гриневич Н. Є. Оцінювання енергетичної та біологічної цінності м’яса Cherax quadricarinatus за годівлі раків різними видами кормів // Технологія виробництва і переробки продукції тваринництва. 2023. № 2. С. 12—21. https://doi.org/10.33245/2310-9289-2023-182-2-12-21.
  96. Жарчинська В. С., Гриневич Н. Є. Удосконалення технології підрощення ракоподібних на прикладі червоноклешневого рака Cherax quadricarinatus // Науковий вісник ЛНУВМБ імені С.З. Ґжицького. 2022. Т. 24, № 96. С. 16—23. (Серія : Сільськогосподарські науки). https://doi.org/10.32718/nvlvet-a9603.
  97. Жарчинська В. С., Гриневич Н. Є. Характеристика показників мінерального складу м’яса Cherax quadricarinatus за згодовування різних видів кормів // Таврійський науковий вісник. 2023. Вип. 133. С. 339—345. https://doi.org/10.32782/2226-0099.2023.133.45.
  98. Інкубатор-укриття для самок австралійського раку Cherax quadricarinatus Von Martens, 1868 в умовах аквакультури / Жарчинська В. С. та ін. // Сучасні проблеми раціонального використання водних біоресурсів : V Міжнар. наук.-практ. конф., 8-9 лист. 2023 р., м. Київ : матер. Київ, 2023. С. 127—129.
  99. Інструменти регулювання та механізми реалізації комбінованих технологічних рішень виробництва австралійського червоноклешневого рака в умовах зростання попиту на нішеву продукцію : методичні рекомендації / Коваленко Б. Ю. та ін. Київ : Національний університет біоресурсів і природокористування України, 2023. 26 с.
  100. Ковтун П. В. Біотехнологія одержання білково-мінеральної біомаси вермикультури та її використання за вирощування Сherax quadricarinatus : дис. … д-ра філософії (PhD) : спеціальність 204. Біла Церква : БНАУ, 2024. 147 с.
  101. Ковтун П. В., Мерзлов С. В. Маса тіла Сherax quadricarinatus та показники вмісту HS-груп у їх печінці за включення у раціони різних доз біомаси вермикультури // Наукові доповіді НУБіП України. 2024. № 1/107. 10 с. https://doi.org/10.31548/dopovidi.1(107).2024.016.
  102. Конструкція для укриття ракоподібних : пат. 154505 Україна. № u 2022 01416; заявл. 03.05.2022; опубл. 22.11.2023, Бюл. № 47.
  103. Методичні рекомендації щодо використання укриття за вирощування австралійського червоноклешневого рака Cherax quadricarinatus в умовах аквакультури / Жарчинська В. С. та ін. Біла Церква : Білоцерківський національний аграрний університет, 2024. 16 с.
  104. Методичні рекомендації щодо культивування гібрида червоних каліфорнійських черв’яків на субстраті із посліду бройлерів, який компостували за активної аерації та застосування її у складі раціонів раків Сherax quadricarinatus / Ковтун П. В. та ін. Біла Церква : Білоцерківський національний аграрний університет, 2024. 10 с.
  105. Методичні рекомендації щодо технології вирощування австралійського червоноклешневого рака Cherax quadricarinatus в умовах аквакультури / Жарчинська В. С. та ін. Біла Церква : Білоцерківський національний аграрний університет, 2024. 35 с.
  106. Перспективний об’єкт аквакультури ракоподібних Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868): біологія, технологія (огляд) / Гриневич Н. Є. та ін. // Водні біоресурси та аквакультура. 2022. Вип. 1. С. 47—62. https://doi.org/10.32851/wba.2022.1.4.
  107. Практичні рекомендації щодо виробництва раків для створення додаткових порівняльних переваг на ринку / Герасимчук В. В. та ін. Київ, 2019. 26 с.
  108. Сидорак Р. В. Біологія та культивування прісноводних раків (Astacoidea) в Україні і світі. Тематичний перелік наукових публікацій (2019–2024 рр.) // Рибогосподарська наука України. 2024. № 2(68). С. 164—185. https://doi.org/10.61976/fsu2024.02.164.
  109. Сучасний стан та тенденції розвитку аквакультури ракоподібних / Іщук О. В. та ін. // Український журнал природничих наук. 2024. № 7. С. 18—24. https://doi.org/10.32782/naturaljournal.7.2024.2.
Головна2025№ 2/2025 (72)2025_02-257_276-Hrynevych