pdf35

Ribogospod. nauka Ukr., 2024; 3(69): 163-177
DOI: https://doi.org/10.61976/fsu2024.03.163
UDC [597-12:578]:[597.553+597.555.2+597.583.1]

Рабдовіруси щуки (Esox lucius Linnaeus, 1758), вугра (Anguilla anguilla Linnaeus, 1758), струмкової форелі (Salmo trutta Linnaeus, 1758), окуня (Perca fluviatilis Linnaeus, 1758) та судака (Stizostedion lucioperca Linnaeus, 1758) (огляд)

Ю. П. Рудь, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , Інститут рибного господарства НААН, м. Київ
О. В. Залоїло, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , Інститут рибного господарства НААН, м. Київ
Л. П. Бучацький, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , Інститут рибного господарства НААН, м. Київ

Мета. Рабдовіруси є одними з найчисельніших та найпоширеніших патогенів риб. Віруси з п’яти родів (Sprivivirus, Perhabdovirus, Siniperhavirus, Scophrhavirus та Novirhabdovirus) родини Rhabdoviridae інфікують різні види риб, включно з представниками коропоподібних (Cypriniformes), лососеподібних (Salmoniformes), окунеподібних (Perciformes), камбалових (Pleuronectidae) та вугреподібних (Anguilliformes). В  списку особливо небезпечних захворювань риб Міжнародної організації зі здоров’я тварин (WOAH) рабдовіруси мають найбільше представників, контроль та моніторинг яких є обов’язковими.

Оскільки рабдовіруси риб значно поширені в Європі, існує потенційна загроза й для аквакультури, тому метою огляду є інформування фахівців галузі (ветеринарів, рибників, власників господарств) щодо біологічних ризиків та загроз, пов’язаних з цією групою патогенів.

Результати. В статті наведені дані щодо окремих рабдовірусів риб, які не входять до списку WOAH (МЕБ), але також несуть потенційну загрозу прісноводній аквакультурі. Коротко описано характеристики рабдовірусів щуки (Esox lucius), вугра (Anguilla anguilla), струмкової форелі (Salmo trutta), окуня (Perca fluviatilis) та судака (Stizostedion lucioperca). Охарактеризовано клінічні ознаки захворювань, спричинених перабдовірусами і спірівірусами, та зазначено методи їх діагностики. Акцентовано увагу на таких методах ідентифікації вірусів, як метод культури клітин, імуноферментного аналізу (ІФА) та молекулярно-біологічна діагностика (ПЛР). Наведено дані щодо поширення перабдовірусів у Європі та методів профілактики спричинених ними захворювань в господарствах.

Практична значимість. Моніторинг рабдовірусів в рибогосподарських підприємствах України дозволить визначити екологічні ніші цих патогенів та встановити потенційні ризики виникнення епізоотій як в умовах аквакультури, так і в природних популяціях чутливих хазяїв. Вивчення молекулярно-біологічних властивостей даних вірусів сприятиме поліпшенню їх діагностики.

Ключові слова: рабдовіруси риб, перабдовіруси, характеристики віріонів, клініка і патогенез, діагностика.

ЛІТЕРАТУРА

  1. Бучацкий Л. П., Рудь Ю. П., Матвиенко Н. Н. Вирусные болезни осетров и лососей. Киев : ДИА, 2020. 240 с.
  2. Рабдовіруси / Бучацький Л. П. та ін. Київ : ДІА, 2024. 228 с.
  3. Taxonomy of Rhabdoviruses Infecting Fish and Marine Mammals / Walker P. J. et al. // Revised Animals. 2022. Vol. 12. 1363. https:// doi.org/10.3390/ani12111363.
  4. Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals. [S. l.] : OIE / World Organisation for Animal Health, 2023. URL : https://www.oie.int/standard-setting/aquatic-manual/access-online (accessed : 15.07.2024).
  5. Transmission experiments with pike fry (Esox lucius L.) rhabdovirus / Bootsma R. et al. // Journal of Fish Biology. 1975. Vol. 7. P. 269—276. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1975.tb04599.x.
  6. First detection of pike fry-like rhabdovirus in barbel and spring viraemia of carp virus in sturgeon and pike in aquaculture in the Czech Republic / Vicenova M. et al. // Dis Aquat Organ. 2011. Vol. 16, No. 95(2). P. 87—95. doi: 10.3354/dao02340. PMID: 21848117.
  7. Characterization of the complete genome sequence of pike fry rhabdovirus / Chen HL. et al. // Arch Virol. 2009. Vol.154(9), P.1489—94. https://doi.org/10.1007/s00705-009-0455-0.
  8. Ahne W., Mahnel H., Steinhagen P. Isolation of pike fry rhabdovirus from tench, Tinca tinca L., and white bream, Blicca bjoerkna (L.) // Journal of Fish Diseases. 1982. Vol. 5. P.  535 —537. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1982.tb00513.x.
  9. A rhabdovirus pathogenic for perch, Perca fluviatilis L.: isolation and preliminary study / Dorson M. et al. // Journal of Fish Diseases. 1984. Vol. 7. P. 241—245. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1984.tb00929.x.
  10. Nougayrède P., de Kinkelin P., Chilmonczyk V. A. Isolation of a rhabdovirus from the pike-perch Stizostedium lucioperca L., 1758 // European Association of Fish Pathologists. 1992. Vol. 12. P. 5—7.
  11. Emerging vesiculo-type virus infections of freshwater fishes in Europe / Betts A. M. et al. // Dis Aquat Organ. 2003. Vol. 57(3). P. 201—212. https://doi.org/10.3354/dao057201.
  12. Genetic diversity and associated pathology of rhabdovirus infections in farmed and wild perch Perca fluviatilis in Ireland / Ruane N. M. et al. // Dis Aquat Organ. 2014. Vol. 2 (112(2)). P. 121—30. https://doi.org/10.3354/dao02801.
  13. Characterization of perch rhabdovirus (PRV) in farmed grayling Thymallus thymallus / Gadd T. et al. // Dis Aquat Organ. 2013. Vol. 11 (106(2)). P. 117—127. https://doi.org/10.3354/dao02654.
  14. First isolation of a rhabdovirus from perch Perca fluviatilis in Switzerland / Wahli T. et al. // Dis Aquat Organ. 2015. Vol. 16 (116(2)). P. 93—101. https://doi.org/10.3354/dao02908.
  15. Mortality outbreak by perch rhabdovirus in European perch (Perca fluviatilis) farmed in Italy: Clinical presentation and phylogenetic analysis / Caruso C. et al. // J Fish Dis. 2019. Vol. 42(5). P. 773—776. https://doi.org/10.1111/jfd.12975.
  16. Molecular investigations of outbreaks of Perch perhabdovirus infections in pike-perch / Bigarré L. et al. // Dis Aquat Organ. 2017. Vol. 127(1). P. 19—27. https://doi.org/10.3354/dao03177.
  17. A novel fish rhabdovirus from sweden is closely related to the Finnish rhabdovirus 903/87 / Johansson T. et al. // Virus Genes. 2002. Vol. 25(2). P. 127—38. https://doi.org/10.1023/a:1020153616947.
  18. Molecular characterisation of the nucleocapsid protein gene, glycoprotein gene and gene junctions of rhabdovirus 903/87, a novel fish pathogenic rhabdovirus / Johansson T. et al. // Virus Research. 2001. Vol. 80 (1–2). P. 11—22. https://doi.org/10.1016/S0168-1702(01)00323-9.
  19. The occurrence of virus infections in elvers and eels (Anguilla anguilla) in Europe with particular reference to VHSV and IHNV / Jørgensen P. E. V. // Aquaculture. 1994. Vol. 123 (1–2). P. 11—19. https://doi.org/10.1016/0044-8486(94)90115-5.
  20. Detection of a phylogenetically divergent eel virus European X (EVEX) isolate in European eels (Anguilla anguilla) farmed in experimental tanks in Italy / Caruso C. et al. // Aquaculture. 2014. Vol. 434. P. 115—120. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.07.024.
  21. First examination of the Lough Neagh European eel (Anguilla anguilla) population for eel virus European, eel virus European X and Anguillid Herpesvirus-1 infection by employing novel molecular techniques / McConville J. et al. // Fish Dis. 2018. Vol. 41(12). P. 1783—1791. https://doi.org/10.1111/jfd.12885.
  22. Rabdovirusna infekcija jegulja prouzročena europskim virusom jegulje X (EVEX) / Gjurčević E. et al. // Croatian veterinary report. 2019. Vol. 27. P. 5—6.
  23. Identification of virus infections of European eels intended for stocking measures / Danne L. et al. // J Fish Dis. 2022. Vol. 45(9). P. 1259—1266. doi: 10.1111/jfd.13658.
  24. Virus infections of the European Eel in North Rhine Westphalian rivers/ Danne L. et al. // J Fish Dis. 2022. Vol. 45(1, P. 69—76. https://doi.org/10.1111/jfd.13536.
  25. Viral diseases of wild and farmed European eel Anguilla anguilla with particular reference to the Netherlands / van Beurden S. J. et al. // Dis Aquat Organ. 2012. Vol. 10 (101(1)). P. 69—86. https://doi.org/10.3354/dao02501.
  26. Complete genomic sequence and taxonomic position of eel virus European X (EVEX), a rhabdovirus of European eel / Galinier R. et al. // Virus Res. 2012. Vol. 166(1–2). P. 1—12. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2012.02.020.
  27. Eel rhabdoviruses: how many viruses, how many strains? / van Beurden S. et al. // 17th EAFP Conference : abstract book. Las Palmas, 2015.
  28. Further spread of perch rhabdovirus on European percid farms / Pallandre L. et al. // J Fish Dis. 2022. Vol. 45(12). P. 1831—1837. https://doi.org/10.1111/jfd.13705.
  29. Development and validation of a two-step real-time RT-PCR for the detection of eel virus European X in European eel, Anguilla anguilla / van Beurden S.J. et al. // Journal of Virological Methods. 2011. Vol. 171 (2). P. 352—359. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2010.11.019.
  30. Антивірусні вакцини для риб (огляд) / Рудь Ю. П. та ін. // Рибогосподарська наука України. 2022. № 3(61). С. 71—104.
Головна2024№ 3/2024 (69)2024_03-163_177-Rud