pdf35

Fisheries Science of Ukraine, 2026; 3(77): 134-151
DOI: https://doi.org/10.61976/fsu2026.03.134
UDC [639.371.2:597-111]:639.3.043.2

Received: 27.07.2026
Received in revised form: 24.08.2026
Published: 30.09.2026

Антиоксидантні реакції та ростовий потенціал молоді руського осетра (Acipenser gueldenstaedtii Brandt & Ratzeburg, 1833) за умов застосування експериментального синбіотика

О. М. Бернакевич, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0002-9144-8534, Львівська дослідна станція Інституту рибного господарства Національної академії аграрних наук України, смт Великий Любінь
Х. Я. Солопова, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0002-9772-7745, Львівська дослідна станція Інституту рибного господарства Національної академії аграрних наук України, смт Великий Любінь
М. З. Кориляк, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0001-8235-5400, Львівська дослідна станція Інституту рибного господарства Національної академії аграрних наук України, смт Великий Любінь
О. П. Добрянська, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. , ORCID ID 0000-0001-7238-5059, Львівська дослідна станція Інституту рибного господарства Національної академії аграрних наук України, смт Великий Любінь

Мета. Оцінити вплив експериментальної синбіотичної добавки, якою збагачували живі корми, на ріст, виживаність та антиоксидантні реакції руського осетра (Acipenser gueldanstaedtii Brandt & Ratzeburg, 1833).

Методика. Дослідження проводили на молоді руського осетра, яка була розділена на дві дослідні та одну контрольну групи. Впродовж 21 доби риб годували наупліями Artemia salina, збагаченими експериментальною синбіотичною добавкою у концентрації 15 та 45 мг/дмі збагачувального розчину. Під час експерименту оцінювали темп росту та виживаність молоді. Після його завершення у тканинному гомогенаті визначали активність антиоксидантних ферментів (каталази та супероксиддисмутази) й інтенсивність пероксидного окиснення ліпідів (вміст дієнових кон’югатів та ТБК-активних продуктів). Умови вирощування риб відповідали нормативним значенням для рециркуляційних аквакультурних систем.

Результати. Встановлено, що збагачення Artemia salina експериментальною синбіотичною добавкою впродовж 21 доби підвищує виживаність та дозозалежно пригнічує процеси ПОЛ у молоді руського осетра. Нижча концентрація (15 мг/дмі збагачувального розчину) блокує утворення первинних продуктів ПОЛ, знижуючи вміст дієнових кон’югатів на 48,8% (p<0,05), що забезпечує максимальний ріст без додаткових енерговитрат на активацію антиоксидантної системи. Збільшення вмісту до 45 мг/дмі збагачувального розчину достовірно знижує вміст ТБК-активних продуктів на 57% за рахунок компенсаторної активації каталази на 91,9% (p<0,05), що робить вказану концентрацію доцільною для застосування в умовах підвищеного ризику виникнення оксидативного стресу.

Наукова новизна. Вперше досліджено вплив експериментальної синбіотичної добавки на ріст, виживаність та антиоксидантні реакції руського осетра.

Практична значущість. Результати роботи можуть бути підґрунтям для вдосконалення технологій підрощування молоді осетрових в РАС, що дозволить підвищити її життєздатність та зменшити відхід риби на ранніх етапах розвитку.

Ключові слова: осетрові (Acipenseridae), біологічно активні добавки, осетрівництво, аквакультура, система антиоксидантного захисту, рециркуляційні аквакультурні системи (РАС), темп росту.

REFERENCES

  1. Derzhavne ahentstvo Ukrainy z rozvytku melioratsii, rybnoho hospodarstva ta prodovolchykh prohram [State Agency of Ukraine for the Development of Land Reclamation, Fisheries, and Food Programs] (2024). Analitychna dovidka pro stan ta obsiahy vyrobnytstva produktsii akvakultury subiektamy hospodariuvannia v Ukraini (za formoiu № 1A-akvakultura) [Analytical report on the status and volume of aquaculture production by business entities in Ukraine (based on Form No. 1A-Aquaculture)]. https://darg.gov.ua/
  2. Long, L., Zhang, H., Ni, Q., Liu, H., Wu, F., & Wang, X. (2019). Effects of stocking density on growth, stress, and immune responses of juvenile Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) in a recirculating aquaculture system. Comparative Biochemistry and Physiology. Part C: Toxicology & Pharmacology, 219, 25–34. https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2019.02.002
  3. Zhao, D. X., Cheng, C., Xiao, M., Zhu, M. J., Li, L. J., Mei, F., & Jian, S. Q. (2022). Effects of stocking density on growth, antioxidant enzyme activity and related gene expression of juvenile Siberian hybrid sturgeon [Acipenser baerii (♀)Ч A. schrenckii (♂)]. Journal of fisheries of China, 46(9), 1582–1592. https://doi.org/10.11964/jfc.20210512834
  4. Aversa-Marnai, M., Perretta, A., Cйspedes, P., Quartiani, I., Conijeski, D., Bollati-Fogolin, M., Villarino, A., Silva-Бlvarez, V., & Ferreira, A. M. (2025). Chronic heat stress reshapes Russian sturgeon innate immune response to Aeromonas hydrophila challenge. Fish Shellfish Immunol, 160, 110219. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2025.110219
  5. Ruban, G. I. (2020). Exogenous Feeding in the Early Life Stages of Sturgeon (Acipenseridae) (Review). Inland Water Biology, 13, 613–619. https://doi.org/10.1134/S1995082920040094
  6. Gradil, A. M., Wright, G. M., Wadowska, D. W., & Fast, M. D. (2014). Ontogeny of the immune system in Acipenserid juveniles. Dev Comp Immunol, 44(2), 303–314. https://doi.org/10.1016/j.dci.2014.01.006
  7. Lobanov, V. P., Pate, J., & Joyce, J. (2023). Sturgeon and paddlefish: review of research on broodstock and early life stage management. Aquac Fish, 9(6), 871–882. https://doi.org/10.1016/j.aaf.2023.04.001
  8. Gisbert, E., & Williot, P. (2002). Advances in the larval rearing of Siberian sturgeon. Journal of Fish Biology, 60(5), 1071–1092. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2002.tb01705.x
  9. Geraylou, Z., Souffreau, C., Rurangwa, E., De Meester, L., Courtin, C. M., Delcour, J. A., & Ollevier, F. (2013). Effects of dietary arabinoxylan-oligosaccharides (AXOS) and endogenous probiotics on the growth performance, non-specific immunity and gut microbiota of juvenile Siberian sturgeon (Acipenserбbaerii). Fish & Shellfish Immunology, 35(3), 766–775. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2013.06.014
  10. Hoseinifar, S. H., Ringш, E., Shenavar Masouleh, A., & Esteban, M. Б. (2016). Probiotic, prebiotic and synbiotic supplements in sturgeon aquaculture: a review. Rev Aquacult, 8(1), 89–102. https://doi.org/10.1111/raq.12082
  11. Abualreesh, M. H. (2026). Effects of probiotics, prebiotics, and synbiotics on immune function, disease resistance, digestive health, and stress management in fish culture. Front. Mar. Sci., 13, 1811972. https://doi.org/10.3389/fmars.2026.1811972
  12. Huynh, T. G., Shiu, Y. L., Nguyen, T. P., Truong, Q. P., Chen, J. C., & Liu, C. H. (2017). Current applications, selection, and possible mechanisms of actions of synbiotics in improving the growth and health status in aquaculture: a review. Fish & Shellfish Immunology, 64, 367–382. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.03.035
  13. Vaezi, M., Khara, H., & Shenavar, A. (2016). Synbiotic (Biomin imbo) alters gut bacterial microflora of Russian sturgeon, Acipenser guldenstadti (Brandt & Ratzeburg, 1833) in a time-dependent pattern. Journal of Parasitic Diseases, 40, 1189–1192. https://doi.org/10.1007/s12639-015-0647-3
  14. Akrami, R., Nasri-Tajan, M., Jahedi, A., Jahedi, M., Razeghi Mansour, M., & Jafarpour, S. A. (2015). Effects of dietary synbiotic on growth, survival, lactobacillus bacterial count, blood indices and immunity of beluga (Huso huso Linnaeus, 1754) juvenile. Aquaculture Nutrition, 21, 952–959. https://doi.org/10.1111/anu.12219
  15. Mocanu, E. E., Savin, V., Popa, M. D., & Dima, F. M. (2022). The Effect of Probiotics on Growth Performance, Haematological and Biochemical Profiles in Siberian Sturgeon (Acipenser baerii Brandt, 1869). Fishes, 7(5), 239. https://doi.org/10.3390/fishes7050239
  16. Vijayaram, S., Razafindralambo, H., Karthikeyan, M., Ringш, E., Prakash, A. K., & Sun, Y-Z. (2026). Advancing Aquaculture Health and Efficiency: A Comprehensive Update on Synbiotic Applications in Fish and Shellfish Farming. Current Microbiology, 83, 162. https://doi.org/10.1007/s00284-025-04662-8
  17. Solopova, Kh. Ya. (2020). Pryrodni mekhanizmy zakhystu koropovykh ryb za urazhennia bakteriinym aeromonozom i za dii synbiotychnoho preparatu Enteronormin [Natural defense mechanisms in carp infected by bacterial aeromonosis and after treatment with the synbiotic drug “Enteronormin”]. Biol. Tvarin, 22(1), 46–49. https://doi.org/10.15407/animbiol22.01.046  
  18. Rud, Yu. P., Smitiukh, H. H., & Mizernytskyi, O. O. (2024). Doslidzhennia vplyvu probiotychnoho preparatu “Enteronormin” na vyroshchuvannia raiduzhnoi foreli (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792) [Study of the influence of the probiotic drug «Enteronormin» on the growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792)]. In Suchasni problemy ratsionalnoho vykorystannia vodnykh bioresursiv [Modern Problems of Rational Use of Aquatic Bioresources]. (pp. 250–252). PRO FORMAT. https://doi.org/10.61976/conf.IF-2024-6
  19. Dobrianska, O. P. (2020). Aktyvnist systemy antyoksydantnoho zakhystu v orhanizmi koropa za vykorystannia u skladi kormu prebiotyka [Activity of antioxidant protection system in carp organism for use in feeding prebiotics]. Water Bioresources and Aquaculture, 2, 112–124. https://doi.org/10.32851/wba.2020.2.11
  20. Zaloilo, I. A., Zaloilo, O. V., Rud, Yu. P., Hrytsyniak, I. I., & Zaloilo, Ye. I. (2021). Zastosuvannia probiotykiv v akvakulturi (ohliad) [Use of probiotics in aquaculture (a review)]. Fisheries Science of Ukraine, 2(56), 59–81. https://doi.org/10.15407/fsu2021.02.059
  21. Zabytivskyi, Yu., Tuchapskyi, Ya., Dobrianska, O., Boretska, I., & Vishchur, O. (2024). Effect of the complex of probiotic microorganisms of the genus Bacillus on the growth, histological structure of intestines and the resistance of sturgeon hybrid juveniles. Fisheries Science of Ukraine, 3, 130–146. https://doi.org/10.61976/fsu2024.03.130
  22. Zabytivskyi, Y., Koryliak, M., Bernakevych, O., Vishchur, O., Solovodzinska, I., Symon, M., Momut, V., & Savchuk, L. (2025). The effect of Sviteco PWC probiotic product on growth, physiological and biochemical status and nonspecific resistance of sturgeon fish juveniles. AACL Bioflux, 18(1), 466–476. https://bioflux.com.ro/docs/2025.466-476.pdf
  23. Onyshchuk, Yu. V., Tretiak, O. M., & Kolos O. M. (2024). The effect of supplementation of feeds with the probiotic “Subalin” on the productivity parameters sturgeon (Acipenseridae) hybrid bester on the first year of cultivation using warm waste water of a power plant. Fisheries Science of Ukraine, 1, 125–141. https://doi.org/10.61976/fsu2024.01.125
  24. Onyshchuk, Yu. V., & Tretiak, O. M. (2025). Economic assessment of the use for the probiotics “Subalin” in the diet of 0+ bester reared under conditions of increased heat load. Fisheries Science of Ukraine, 3, 320–336. https://doi.org/10.61976/fsu2025.03.320
  25. Garcia Sampaio, F., Hasan, M. R., & El-Sayed, A.-F.M. (Eds.). (2025). An overview on local alternative ingredients, aquafeed supply and feeding management in selected African countries. Fisheries and Aquaculture Technical Papers, 734. FAO. https://doi.org/10.4060/cd5754en
  26. Andriushchenko, A. I., Vovk, N. I., & Kondratiuk, V. M. (2018). Osetrivnytstvo. Stavove osetrivnytstvo: pidruchnyk. Tom II. [Sturgeon Farming. Pond-based Sturgeon Farming: A Textbook. Vol. II]. TsP “KOMPRYNT”.
  27. Posner, L. P., Harms, C. A., & Smith, S. A. (2019). Sedation, anesthesia, analgesia and euthanasia. In S. A. Smith (Ed.), Fish diseases and medicine (pp. 283–304). CRC Press.
  28. Slivinska, L. H., Maksymovych, I. A., Leno, M. I., & Halias, V. L. (2014). Laboratorna diahnostyka u veterynarnii medytsyni. Dovidnyk. 2-he vydannia [Laboratory Diagnostics in Veterinary Medicine. Handbook. 2nd Edition].
  29. Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem, 72, 248–254.
  30. Solopova, Kh. Ia., Bernakevych, O. M., Koryliak, M. Z., & Vishchur, O. I. (2025). Vplyv ekstraktu hryba shyitake (Lentinula edodes) na antyoksydantnyi zakhyst ta hormonalnyi profil u molodi ruskoho osetra (Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1856) [Effect of shiitake (Lentinula edodes) mushroom extract on the status of antioxidant protection system and the hormonal profile of the Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1856) juveniles]. Water Bioresources and Aquaculture, 2(18), 118–133. https://doi.org/10.32782/wba.2025.2.6
  31. Shija, V. M., Tran, N. T., Shehata, A. I., Zheng, X., Zhang, M., Bakky, M. A. H., ... & Li, S. (2026). Synergistic impacts of probiotics and prebiotics (synbiotics) in fish farming. Fish & Shellfish Immunology, 174, 111358. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2026.111358
  32. Musavi, M., Hasanpour, S., Safari, R., Imanpour, M. R., & Gutiйrrez, J. (2022). Combined effects of Pediococcus acidi lactici and natuzyme on growth performance, hematology and immunity indices in juvenile beluga (Huso huso). Aquaculture Reports, 24, 101180. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2022.101180
  33. Aluta, U. P., Nikolić, N. Ć., Yildirim, A., Zupičić, I. G., Akhtar, P., Radosavljevic, V., & Lima, S. A. C. (2026). Functional Feeds as Immunostimulants for Aquaculture: A Molecular Perspective. Aquaculture Nutrition, 2026, 2220437. https://doi.org/10.1155/anu/2220437
Головна2026№ 3/2026 (77)2026_03-134_151-Bernakevych